DSTM1500
M1161/M1162
50次/50次×5
建议上样量
3-5 µl/次。可根据上样孔大小选择合适上样量。
DSTM15000已预混上样缓冲液，可直接进行电泳分析。
建议电泳条件
8 cm 1%琼脂糖凝胶，
1×TAE，7 V/cm，45 min。
保存
常温保存3个月，长期保存请置于-20℃。
各条带含量
指示带 125 ng/5µl
非指示带 50 ng/5µl
产品说明
DSTM15000由7条双链线状DNA片段混合而成，适用于确定250 bp至15 kb的线性双链DNA片段大小，指示带为2500 bp，便于电泳后观察。每条带都通过严格的物理定量，可用于测定目的片段的大小和含量。
产品浓度为85 ng/µl。
条带组成（bp）
250、1,000、2,500、5,000、7,500、10,000、15,000
注意事项
● 请选择高品质的琼脂糖，并及时更换电泳缓冲液。溶胶不充分会导致因胶浓度不均而出现电泳条带异常；陈旧的缓冲液离子缓冲能力不足，可能导致Marker条带泳动缓慢，并伴随弥散现象。
● 胶浓度、电压、电泳时间是影响DNA片段分离的主要因素，为获得最佳电泳分离效果，建议按照东盛推荐的条件进行电泳分析。
● 上样量的多少取决于样品的浓度与加样孔的大小。由于东盛Marker的浓度较高，通常对于宽3mm（厚0.75-1mm）的加样孔，建议上样2-3 μl，对于宽5mm（厚0.75-1.5mm）的加样孔，建议上样4-6 μl。过多的上样量可能导致条带相互挤压，分散不充分，跑不开，影响条带分离效果。
● 使用本产品进行定量分析时，可将目的片段做梯度上样，选择亮度与Marker条带最为接近的片段进行分析。
● 进行PAGE胶电泳分析时，建议取0.5-1 μl Marker并用1×loading buffer稀释到适当体积上样。
Q&A
● 对于非变性凝胶电泳，Marker是否需要DNA变性?
答：本公司Marker产品中只有Lambda DNA Marker为质粒酶切产物，在电泳上样前如加热处理可获得最佳效果，其余产品均不需点样前加热处理；另外电压太高也会使凝胶过热和DNA变性造成带型异常。
● 当DNA停留在凝胶点样孔处时该怎么办？
答：检查胶浓度是否在适合分离DNA片段的范围，点样孔是否高质，确保电泳的正负极正确，检查电泳缓冲液是否具有缓冲能力，确保DNA样品的纯度，如进行PCR产物的纯化，确保样本中没有或只存在少量的DNA结合蛋白或其他可与DNA结合的化合物。
● 为什么DNA条带不理想？
答：影响电泳条带的因素很多，如凝胶种类或浓度不合适，质量不佳；上样量过多或过少；样本的纯度不高，盐浓度过高；电泳缓冲液缓冲能力不足，有核酸酶污染；电泳条件不正确；染色不充分或不均匀；跑胶后没有及时拍照。
● 为什么定量数据不正确以及如何准确定量样品？
答：样品和Marker的上样条件不同，参考条带不正确，凝胶的不均匀染色或背景过高都会干扰凝胶定量结果。样品DNA和Marker DNA在电泳前选用相同的上样染料处理，调整样品浓度，使其在凝胶中的含量与分子量最接近标准DNA条带，样品DNA和Marker的上样体积尽量接近，样品用1×上样缓冲液稀释；定量时以分子量最接近的标准条带为参照物，分析样品条带的含量；利用凝胶图像分析软件，如SensiAnsys可对DNA进行准确定量，比目测条带方法更精确。
● 为什么在变性聚丙烯酰胺/尿素凝胶里电泳时会出现杂带？
答：一般来说，双链DNA Marker不推荐用于变性电泳，否则会产生非正常带型，即出现所谓的杂带。这种出现异型带的现象，在100 bp以下的条带极易发生。当您的实验不可避免的要使用变性聚丙烯酰胺/尿素凝胶进行电泳时，我们建议，将样品和Marker选用同样的变性上样缓冲液进行变性处理后上样，以消除二级结构。