而Wako旗下两款Bambanker 无血清即用型细胞冻存液，无需程序性降温，可在-80℃长期保存细胞。节省血清、节省购买程序降温和液氮所需的昂贵费用，最关键的可以节省您的宝贵实验时间！

  ● BambankerTM无血清细胞冻存液（收集细胞，加入产品后-80℃长期保存或-80℃过夜后置于液氮中保存）

● BambankerTM Direct 无血清培养基（无需离心收集细胞）

1、BambankerTM无血清细胞冻存液

产品特点

* 无需程序性降温，直接使用

* 可-80℃或液氮中长期冻存

* 即用型细胞冻存液

* 无血清，成份确定，避免由支原体、病毒、朊病毒及其他病毒颗粒引发的污染

* 产品经无菌检测，符合药典

* 适用于肿瘤细胞和常规细胞，有研究表明同样适合各类敏感细胞，如ES细胞、原代细胞

* 高复苏率（请见对比图效果）

操作流程：

①收集对数生长期的细胞（5 x 105 ~ 1 x 107）；

②用1ml BambankerTM重悬细胞，置于冻存管中，无需预冷，直接-80℃或液氮中长期冻存。

③用恒温箱或者水浴锅快速复苏细胞。

* 细胞必须处于对数生长期（建议对数期，复苏率会更高）

操作流程图示

无菌检测：

内毒素：生色底物法

支原体：荧光抗体法

真菌和细菌：依据药典

（可索取无菌检测检验证书）

BambankerTM  与其他相关产品比较：

应用

【低温冻存实验证明以下细胞保存完好】

3T3‐L1（小鼠前脂肪细胞系）	A431（人扁平上皮癌细胞系）	BAEC（牛主动脉血管内皮细胞系）
Balb/3T3（小鼠成纤维细胞系）	C2C12（小鼠骨骼肌细胞系）	Daudi（人 B细胞系）
ECV304（人脐静脉内皮细胞系）	H295R（肾上腺皮质细胞）	HEK293（人胎儿肾细胞系）
HEK293T（人胎儿肾细胞系）	HeLa（人子宫颈癌细胞系）	HeLa S3（人子宫颈癌细胞系）
HepG2（人肝癌细胞系）	HFF（人正常成纤维细胞系）	Huh7（人肝癌细胞系）
Jurkat（人白血病T细胞系）	K562（人慢性骨髓性白血病细胞系）	KATOIII （人胃癌上皮细胞系）
KLM‐1（人胰腺癌细胞系）	MDCK（犬肾小管上皮细胞系）	MEF（小鼠胚胎成纤维细胞）
NIH3T3（小鼠胎儿皮肤细胞）	OKT4（小鼠杂交瘤细胞）	OP9（小鼠骨髓基质细胞）
P3U1（小鼠骨髓瘤细胞系）	PANC‐1（人胰腺癌细胞系）	PC12（大鼠源肾上腺嗜铬细胞瘤）
RPE（人细膜上皮细胞系）	SNL（小鼠胚胎成纤维细胞）	TSU‐Pr1（人前列腺癌细胞系）
Vero（非洲绿猴肾细胞系）	human γδT cells （人γδT细胞）	human B cell line （人B细胞系）
猴B细胞系	人外周血活化淋巴细胞	永生化人肌肉细胞
小鼠脾脏活化淋巴细胞	小鼠ES细胞系	人胃上皮细胞

ES细胞（小鼠）使用实例。
T.Hikichi,et al; Differentiation Potential of Parthenogenetic Embryonic Stem Cells Is Improved by Nuclear Transfer, Stem Cells, 2007, 25, 46-53

 

2、BambankerTM Direct 无血清培养基（无需离心收集细胞）

产品特点：

本品不需要复杂的离心步骤收集细胞，只需要往养有细胞的培养基内加入等量的本产品，再分装到冻存管，放入-80℃或液氮中长期冻存。

①不需冻存前预处理，操作简便；   ②不需稀释直接使用； ③无需分步降温，直接使用；

④可快速、长期冻存细胞（-80℃或液氮）                 ⑤不含血清

 

流程图示：

BambankerTM参考文献（部分）

Bambanker Publications  List

00001. Hikichi T., et al.: Differentiation Potential of Parthenogenetic Embryonic Stem Cells Is Improved by Nuclear Transfer, Stem Cells, 25: 46-53 (2007).

00002. Thuy BH, et al.: Essential role of paternal chromatin in the regulation of transcriptional activity during mouse preimplantation development. Reproduction, 141: 67-77 (2011).

00003. Saeki K. et al.: High Efficiency Production of Subculturable Vascular Endothelial Cells from Human Embryonic Stem Cells, Cloning and Stem Cells, 4: 509-22 (2009).

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T-Cell

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00005. Agata H., et al., Effect of ischemic culture conditions on the survival and differentiation of porcine dental pulp-derived cells,Differentiation, 76 (9): 981-93 (2008)

00006. Kamada H., et al., In-vitro and in-vivo study of periodontal ligament cryopreserved with a magnetic field, American Journal of Orthodontics & Dentofacial Orthopedics, 140 (6): 799-805 (2011)

00007. Mieno S., et al., Effects of diabetes mellitus on VEGF-induced proliferation response in bone marrow derived endothelial progenitor cells. J. Card Surg., 25 (5): 618-25 (2010)

00008. Oshima N., et al., Optimized method for culturing outgrowth endothelial progenitor cells, inflammation and Regeneration, 31 (2): 219-227 (2011)

0009. Liu DG et al, Relation between human decay-accelerating factor (hDAF) expression in pig cells and inhibition of human serum anti-pig cytotoxicity: value of highly expressed hDAF for xenotransplantation, Xenotransplantation, (1): 67-73 (2007)